病原性微生物の動物感染試験は、生物学的安全事故の重要な危険防止ポイントです。 感染した動物によって運ばれる病原体は、操作中に空気エアロゾル、分泌物、および排泄物を介して実験労働者に感染する可能性があります。
動物感染の操作には、動物の麻酔、薬物投与、サンプル収集、安楽死、および剖検が含まれます。 ニワトリ胚実験は、感染した動物の操作に起因することもあり、さまざまな事故を引き起こす可能性があります。 この記事では、事故の種類、応急処置、事故現場の操作、事故防止について、XNUMXつずつ解説していきます。
1. 動物実験室における事故の種類
1.1 刺し傷または切り傷刺し傷は、麻酔、薬剤投与、サンプリング、ニワトリ胚接種の過程で発生することがよくあります。 切開による損傷は、手術や解剖などの際に発生することがよくあります。
1.2 ひっかき傷 ひっかき傷は、敷料の交換、麻酔、体温測定などの過程で発生することがよくあります。
1.3 動物の脱走は、麻酔や敷料の交換中によく発生します。
1.4 麻酔の過剰摂取 中型および大型動物における麻酔の過剰摂取は事故とみなされます。
1.5 予想外のニワトリ胚実験
・ニワトリ胚接種時の刺し傷
・ウイルス採取時のこぼれ
・ニワトリ胚輸送時の落下
2. 動物実験室での事故に対する緊急計画
2.1 感染性の動物実験事故の可能性に対応して、バイオセーフティラボの安全で安定した運営を確保するために、効果的な事故処理計画を策定する必要があります。
2.2 事故が発生した場合の廃棄手順の原則は、スタッフの健康と安全を保護し、実験室環境と外部環境の汚染を最小限に抑えることです。
2.3 対策の原則は、拡散を制御し、感染源を制御し、汚染された物質と汚染された場所を安全に処分することです。
2.4 緊急時計画には、責任者、組織、緊急時通信、報告内容、個人の保護と対応手順、緊急時装備、避難計画と経路、汚染源の隔離と消毒、人員の隔離と治療、オンサイトの隔離と管理、リスクコミュニケーションなど
2.5 実験室は、すべての人員 (訪問者を含む) を訓練して、緊急時の手順、避難経路、および避難集合場所に精通する必要があります。 年に少なくともXNUMX回の訓練を実施する
3.動物実験室における事故時の現場対応のポイント
実験室で動物の事故が発生した場合、現場での処分は非常に重要であり、詳細な取り扱いにより、実験室の汚染や人的感染のリスクが大幅に減少します。 同時に、現場での治療と使用に必要な救急機器と機器が装備されています。 応急処置キットの場所: 保護エリアに配置する必要があります。 組成物 (含むがこれらに限定されない): 75% エタノール、ヨードホール、バンドエイド、ガーゼ、包帯、ハサミ/ピンセット、医療用テープなど
01) 針刺し傷・切り傷、引っかき傷・噛み傷の出張治療
①実験を直ちに中止し、実験動物を密閉ケージに入れる。
② 別の実験者が負傷者に 75% エタノールを噴霧し、手袋を外した (生物安全キャビネット内)
③患部を手でつまんで血を流し、きれいな水または洗眼液で傷口を洗い流します。
④ 応急処置キットを取り出し、ヨードフォアまたは適切な消毒剤で汚染された皮膚と傷を数回拭きます。
⑤傷口をきちんと整え、清潔な手袋を着用し、決められた経路で避難・退室する
⑥ 事故報告
⑦ 医学的評価・指定医療機関・隔離等
この種の事故の現場での取り扱いの焦点:
①管理動物
②傷をきれいにする
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02) 脱走動物の現場処理
①すぐに実験を中止し、ハンティングを行う。 原則として、脱走動物を捕獲する前に動物実験室を離れてはならない。
② 実験室に小さなげっ歯類が逃げた場合は、すぐに柄の長いピンセットなどで尻尾の付け根を手早くしっかりとつかみ、ケージに入れます。 動物がすぐに逃げ出し、ピンセットでつかみにくい場合は、専用のネットバッグを使用してつかみます。 動物が器具の下のつかみにくい場所に逃げた場合は、ネットバッグハンドル（ネットバッグはハンドルとネットバッグに分割できます）を使用して、動物を器具から慎重に追い出してからつかみます。
③ 室内換気の頻度を上げ、動物の逃げ道と動物が飛散した血液や分泌物を湿らせた消毒布またはペーパータオルで 30 分間覆い、指定されたオートクレーブ用容器に入れます。 担当者に報告する XNUMX 回目の除染を組織する。
この種の事故の現場での取り扱いの焦点:
①げっ歯類の脱走が多く、捕獲は実験室に限定する。 パニックにならず、何度も掴んでください。 動物への刺激を最小限に抑えます。
② 原則として、動物が実験室から公共の場所に逃げ出し、公衆衛生上の問題を引き起こさないように、殺処分される前に実験室を離れてはならない。
03) 麻酔過多の現場治療
麻酔の過剰摂取の兆候
軽度: 呼吸速度が大幅に低下し、舌が真っ赤から暗色に変わるなどの軽度の低酸素状態にある実験動物を指しますが、それでも定期的に呼吸しています。 呼吸の深さは正常で、循環器系に明らかな障害はありません。 血圧と心拍数は正常です。
重度：呼吸数が急激かつ不規則に低下し、場合によっては低下し、突然深く浅い、明らかな低酸素症、たとえば紫色の舌、血液検査での酸素分圧と酸素飽和度が大幅に低下し、循環器系に影響が及ぶ場合心拍が遅くなり、血圧が低下します。 ただし、角膜反射は存在します。
重大: 呼吸停止、心拍数の低下、不規則な心拍、血圧の低下、または心停止。
アプローチ
①呼吸が著しく遅く不規則であるが、心拍は正常である場合：人工呼吸・胸骨圧迫を行い、適切な若返り剤を投与する。
② 呼吸が停止し、心拍が残っている場合 ① 人工呼吸を行い、必要に応じて人工呼吸器または酸素を使用します (O2 の吸入は 95%、CO2 は 5%)。 ② 50% グルコース溶液を注入します。 ③アドレナリンと若返り剤を与える。 アシドーシスを修正するために静脈内に 5% 重炭酸ナトリウムを使用します。
③呼吸と心拍が停止した場合：1：10000アドレナリン溶液の心臓内注射。 呼吸刺激剤 25% Nixamir は、静脈内または心臓内に注射されます。 20 mg/mL のドーパミンを注射すると、血圧が上昇します。 アシドーシスを修正するために静脈内に 5% 重炭酸ナトリウムを使用します。
この種の事故の現場での取り扱いの焦点:
① 中・大型動物は麻酔過多になりやすい。
②麻酔過多時の応急処置の際の引っかき傷や噛み傷を防ぎます。
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04) ニワトリ胚実験における事故処理
ニワトリ胚の接種時の刺し傷 - 処置は1回の「刺し傷処置」と同じ
ウイルス採取・処理中の流出は「感染性物質の流出」と同じ
ニワトリ胚輸送時の落下対応
① 滴下部を吸水紙で覆い、有効塩素1%を含む消毒液を外側から内側に流し込み、卵の殻、卵黄などの固形物を包み、ピンセットで集めて指定のオートクレーブ用容器に入れる。 担当者に報告する XNUMX 回目の除染を組織する。
②落下箇所から半径1メートル以内に消毒液を流し込み、30分間作用させる。
③消毒液を全体に散布後、実験者は所定のルートで退出
④ 当番の職員に再度実験室の清掃を報告する。
この種の事故の現場での取り扱いの焦点:
①卵黄は固形物に分類され、高圧下で採取する必要があります
②尿膜液は粘性があり、通常の尿液より消毒に時間がかかります。
③消毒剤の選択は、操作する病原体によって異なります。 塩素系消毒剤は一般的な消毒剤です。
4. 動物実験室での事故防止
01) 針刺し、切り傷、引っかき傷、かみ傷
① 保護手袋の着用：噛みつき防止手袋・切り傷防止手袋
②適切なホルダーを使用する
③動物を完全に麻酔してから操作します。
02) アニマルエスケープ
① 動物を完全に麻酔してから手術する
② 動物保定技術研修に参加
③ 安全キャビネット内での操作
④ケージが覆われていることを確認し、ケージホルダーに戻します。 霊長類は、適切なケージ ロックを装備する必要があります。
03) 麻酔過剰摂取
①麻酔薬を使用する
②少量分割投与
a) 麻酔中は動物の体温が下がりやすいので、断熱対策を行うこと。
b) 静脈内注射は遅くする必要があります。 同時に、筋肉の緊張、角膜反射、皮膚の挟み込みに対する反応を観察します。 これらの活動が大幅に弱体化または消失した場合は、注射を直ちに中止する必要があります。 慢性的な実験を行う場合、寒い冬には、麻酔薬を注射前に動物の体温まで加熱する必要があります。
③麻酔応急処置：強心剤、呼吸刺激剤、炭酸水素ナトリウム（アシドーシスの矯正に使用）、高張ブドウ糖（血圧を上げるために使用）などを装備。
04) ニワトリ胚実験
胚移植は輸送用コンテナを使用します。 微生物を接種したニワトリ胚は、落下時の飛沫やこぼれを防ぎ、その後の消毒および滅菌のために病原微生物を包装容器に閉じ込めるために、二重の硬くて壊れない高圧耐性包装で実験室に輸送する必要があります。